Таблица 2.3.1. - Состав питательной среды Мурасиге – Скуга

42 
Содержание пластидных пигментов определяли по оптической плотности 
ацетоновой вытяжки на спектрофотометре LKB Ultrospec – II при 662 нм, 644 
нм и 440 нм., а расчеты проводились по уравнению Хольма-Веттштейна [102]. 
Полученные экспериментальные данные статистически обработаны [39]. 
 
2.3.1. Схема проведения опытов 
 
Опыт 1
.
Отработка режимов стерилизации. В исследовании использованы 
такие химические компоненты, как диацид, хлорамин, гипохлорид Са, спирт 
этиловый, вода в различных концентрациях, последовательности и 
длительности действия, а также антибиотики стрептомицин и нистатин. 
Опыт 2.
Подбор питательных сред и регуляторов роста для введения 
эксплантов граната и инжира в культуру 
in vitro
. В качестве базовой среды 
использовали широко распространенную среду Мурасиге-Скуга с добавлением 
витаминов В
1
; В
6
; В
12; 
РР; С, а также мезоинозита. В качестве фитогормонов 
использовали нафтилуксусную кислоту (НУК); индолилмасляную кислоту 
(ИМК); индолилуксусную кислоту (ИУК); кинетин (К); 6-бензиламинопурин 
(6-БАП), дополнительно добавляли и сахарозу. Для каждого варианта 
использовали свою концентрацию. 
Опыт 3.
Изучение влияния срока изоляции эксплантов на их 
морфогенную активность. Апикальные и пазушные почки вычленялись в 
течение года (январь-декабрь) с последующим введением в культуру 
in vitro
. 
Опыт 4.
 
Подбор оптимальных композиций ростовых веществ для 
укоренения эксплантов. В исследованиях, в качестве индукторов ризогенеза 
были использованы нафтилуксусная кислота (НУК), β-индолилмасляная 
кислота (ИМК) и кинетин (К), как по отдельности, так и в сочетании. 
Опыт 5.
 
Подбор оптимальных компонентов и сочетаний субстратов для 
адаптации регенерантов в нестерильных условиях. После развития корневой 
системы пробирочные растения пересаживали в горшочки с различными 
типами субстрата для адаптации к условиям 
in vivo
.

43 

жүктеу/скачать 1,98 Mb.

Достарыңызбен бөлісу: