299
Наличие большого разнообразия единиц активности ферментов, которые применя-
ют разные производители, обусловлен, прежде всего, тем, что каждому производителю
удобно применять «свою» единицу активности для стандартизации своих ферментов при
производстве.
Проблемы для потребителя заключаются в сложности ориентирования в этом много-
образии предлагаемых рынком препаратов и часто в невозможности их сравнения. Про-
изводители указывают специфические активности ферментов, как правило, руководству-
ясь своими понятиями о единицах активности и методах их определения. В результате
предлагаемый достаточно дорогостоящий анализ активности не обеспечивает сравнимо-
сти результатов.
В результате, потребителю остается ориентироваться на рекомендуемые в инструк-
циях по применению нормы ввода, которые предлагается принимать на веру [3,4,5, 7].
На практике мы видим, что определение активности ферментов показывает нам актив-
ность того или иного энзима, входящего в коммерческий продукт. Эта активность гово-
рит о «живучести» фермента [8]. Надо обратиться к возможности определить количество
конечного продукта, который накапливается в результате реакции «фермент-субстрат»?
Продукт реакции, т.е. моносахарид, который, как правило, является редуцирующим
(восстанавливающим), можно определить несколькими способами. Одним из общепри-
нятых способов является метод с ДНС-реактивом (3,5-динитросалициловая кислота)
[6,9,11].
В результате, конечные потребители – производители мяса птицы и яйца, вынуждены
проводить производственные испытания для подбора наиболее эффективного продукта
на рынке, который бы удовлетворял их требования по цене и окупаемости затрат на него.
Эти производственные испытания связаны с финансовыми и трудовыми затратами, от-
влекая ресурсы предприятия на побочную деятельность, которая не связана с производ-
ством.
Сегодня специалисты не могу полагаться на определение активности ферментов и
эта ситуация предполагает проведение предварительных производственных испытаний
любого ферментного продукта, ранее не применяемого на данном предприятии, либо по-
лагаться на рекомендации коллег и применять, полагаясь на веру. Это утверждение не ка-
сается кормовых фитаз в силу ряда причин, которые в этой работе мы не рассматриваем.
Мы в этой работе предлагаем выделить понятие «активность» и «эффективность».
Активность - это работа фермента в «рафинированных»
условиях при определенной
температуре, рН, в установленном интервале времени и с химически чистым субстра-
том (зачастую условия которых далеки от условий в ЖКТ), которая показывает качество
или, так сказать, его жизнеспособность с учетом срока годности, термостабильности и
стабильности при хранении. Эффективность – это результат работы фермента по вы-
свобождению свободных сахаров (энергии) в «полевых» условиях из субстрата, которым
являются любое кормовое сырье или комбикорм.
В результате проведенной работы нами сделаны следующие выводы:
1. Указан способ изменения рН буферных растворов в виде имитации перемещения
химуса в разные отделы желудочно-кишечного тракта.
2. В работе использован известный классический метод с использованием
ДНС-реактива (восстановление 3,5-динитросалициловой кислоты до 3-амино-5-
нитросалициловой кислоты под действием восстанавливающих сахаров, имеющей крас-
но-оранжевую окраску, интенсивность окраски мы определяли спектрофотометрически
при длине волны 540 нм.
3. Использованы единицы оптической плотности окраски реагента в надосадочной
жидкости. ДНС-реактив рассчитывали по градуировочному графику, построенному для
глюкозы [6,11].
300
4. Анализ имитирует пищеварение, т.к. рН 4 является более распространенным рН в
зобе и железистом желудке, учитывая буферную способность корма повышать рН (още-
лачивание), а рН 6,9 является более распространенным рН в тонком кишечнике. Под-
робнее об обзоре данных рН в различных отделах кишечника птицы, приведены у M.
Bedford, G. Partridge [8]. Мы взяли средние цифры рН приведенных значений.
5. Основная цель - получить в испытаниях in
vitro все редуцирующие сахара, по-
лученные в результате разрушения различных зерновых субстратов НПС. По нашему
мнению, максимальной водоудерживающей способностью могут обладать арабинокси-
лан и ксилан. Сама ксилоза, находящаяся вне полимерных комплексов, обладает мень-
шей водоудерживающей способностью, что вызывает уменьшение вязкости химуса под
действием ксиланаз. Полученный состав восстанавливающих сахаров под действием
ферментов и определяет их эффективность. Чем выше количество моносахаридов, тем
больше доступной энергии можно получить, и это снижает вязкость химуса. Количество
высвобожденной ксилозы также указывает на эффективность ферментной композиции.
6. Результаты показались нам интересными, поскольку эффективность, т.е. количе-
ство
выделенных сахаров, варьировала в зависимости от мультиферментного состава,
вида зернового сырья или их смеси, а также от изменения рН.
7. Полученные результаты свидетельствуют о возможности
подбора эффективной
мультиферментной композиции для конкретного сырья, конкретной структуры рациона
еще до производственных испытаний, а также с высокой долей вероятности подтвердить
матричные значения ферментов по энергии, поскольку доля дополнительно выделенные
сахара есть не что иное, как дополнительная доступная энергия.
8. Сегодня лабораториям требуются простые и доступные способы сравнения ком-
мерческих ферментных препаратов. Прикладная, рутинная кормовая энзимология сегод-
ня нуждается в простых и дешевых методах скрининга, которые могут быть доступны
не только крупным агрохолдингам, но и небольшим лабораториям на комбикормовом
заводе или птицефабрике.
Достарыңызбен бөлісу: