мембраной
в которых активно функционируют митохондрии. Тем самым, происходит некое
дополнительное обособление определенной части митохондрий от ядра. Эти везикулярные
митохондрии интактны их главной отличительной чертой является чрезвычайно интенсивный
митохондриальной ДНК (мтДНК)]. Смысл такого поведения
митоходрий и резкого накопления мтДНК в предсмертной клетке пока еще не ясен.
Значительное увеличение содержания мтДНК и массы митохондрий на фоне остановки
репликации яДНК происходят также при старении животных и человека.
Заметная апоптозная деградация хроматина происходит
ступенчато под действием
индуцированных, в частности каспазами , эндонуклеаз, которые сначала атакуют хроматин в
областях относительно протяженных розеточных петель (доменов) с высвобождением крупных
50-300 kb фрагментов. Это отчетливо наблюдалось у растений табака при гиперчувствительном
ответе на инфекции , при апоптозе клеток эндосперма в развивающейся зерновке, пшеницы .Затем
наступает черед межнуклеосомной фрагментации ДНК, крупные фрагменты хроматина атакуются
эндонуклеазами в области межнуклеосомных спейсеров,
которые по сравнению с
ассоциированной с октамерами гистонов нуклеосомной ДНК более доступны действию
эндонуклеаз. В результате высвобождаются фрагменты хроматина с
длиной ДНК в них около 180 пар нуклеотидов. Это происходит в стареющем колеоптиле
пшеницы (рис. 2)],
рис2. ДНК из колеоптилей контрольных проростков различного возраста: 1) 8-дневные проростки;
2) 6-дневные проростки; 3) 4-дневные проростки.
При электрофоретическом разделении в агарозном геле такая ДНК выглядит в виде некой
лестницы (см. рис. 2). При некрозе такая лестница не обнаруживается: в некротических клетках и
тканях ДНК очень быстро и хаотично деградирует.
Существуют и другие, в том числе и цитологические методы обнаружения апоптозной
деградации (фрагментации) ДНК. В
частности, для этой цели широко используется так
называемая TUNEL (terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nick end$labeling)
процедура. В ее основе лежит флуоресцентное мечение высвобождающихся при деградации ДНК
множественных 3’-OH концов. Однако, довольно часто бывает так, что по характерной
измененной морфологии клетка явно подвержена апоптозу, а TUNEL-процедура его не выявляет.
Это зависит от стадии апоптоза; если он зашел уже довольно далеко, гидролиз ДНК может
происходить с образованием 5’-OH и 3’-фосфатных концов, которые не
обнаруживаются этим
методом.
С другой стороны, на определение апоптоза этим методом могут накладываться и
неиндуцированные апоптозом однотяжевые разрывы (дефекты) ДНК, часто множественно
возникающие при воздействиии разных факторов на клетку и подвергающиеся обычно
последующей репарации. Поэтому, как правило, наиболее надежно апоптоз детектируется путем
оценки общей цитологической и биохимической картины с выявлением специфических маркеров
апоптоза, среди которых межнуклеосомная фрагментация ДНК занимает ведущее место. Такая
фрагментация ДНК является уже одной из терминальных и необратимых стадий апоптоза, за
которой следует дальнейшая быстрая, уже относительно неспецифическая и глубокая деградация
ДНК нуклеазами.
Как и у животных, при апоптозе у растений сильно активируются разные
«терминальные» ДНК-азы, атакующие как одно так и двутяжевые участки ДНК и активируемые
Ca2+, содержание которого в апоптозных клетках растений обычно значительно увеличивается.
Выделены и описаны cДНК, кодирующие ДНК-азы,которые принимают участие в терминальной
деградации ДНК в эндосперме ячменя и во время превращения мезофильных клеток цинии в
сосудистые структурные элементы [29]. Предполагается, что с одной стороны, такая интенсивная
деградация ДНК необходима и важна для того, чтобы «неправильная» ядерная ДНК из апоптозной
клетки уже не могла быть перенесена в другие клетки, а с другой стороны, это
служит
эффективным путем использования пластического (нуклеинового) материала другими нормально
функционирующими клетками в развивающихся органах (тканях) растения.