рецептор и активируют сигнал клеточного самоубийства. Для экспериментов мы выбрали
хорошо известную линию Т-лимфобластных клеток человека
Jurkat
, выделенных много
лет назад из крови
больного лейкозом мальчика, на поверхности которых присутствует
рецептор Fas. Добавление в питательную среду aнти-Fas-моноклональных антител
вызывает быстрое развитие апоптоза этих клеток. Нам нужно было получить культуру,
в которой клетки были бы лишены этого рецептора или чтобы рецептор оказался
неработающим, то есть клетки, полностью устойчивые к действию анти-Fas-антител. Для
этого мы использовали известный
прием клеточной селекции, выращивая культуру в
присутствии микроскопических концентраций антител. По мере роста культуры
концентрацию антител постепенно увеличивали, пока не получили клетки,
прекрасно
растущие в среде с антителами. Поскольку полученная в результате этого эксперимента
культура первоначально росла в чашке с номером А4, мы ее так и назвали — А4, еще
не предполагая, что это чисто рабочее название присвоено совершенно уникальной
клеточной линии.
По своему внешнему виду и набору поверхностных антигенов клетки А4 сходны с
родительскими клетками
Jurkat
,
но не имеют рецептора Fas, поэтому анти-Fas-антитела
не стимулируют их гибель. Этот результат не был неожиданностью. Озадачивало другое:
полученный клон в полной мере сохранил присущую родительской линии экспрессию
рецепторов смерти других типов: АРО-2 для лиганда TRAIL и TNFR-1 для цитокина
TNFa, однако применение этих лигандов не вызвало у клеток А4 никаких признаков
апоптоза, хотя каждый из них активировал программу гибели родительских клеток
Jurkat
.
Объяснение этому феномену могло быть только одно: устойчивость клеток А4 к апоптозу
обусловлена не отсутствием соответствующего
рецептора смерти, а нарушениями в
каскаде последующих реакций передачи апоптозного сигнала.
Поскольку сигнальные каскады от «внешних» (рецепторы) и «внутренних» (поражение
внутриклеточных мишеней) сигналов апоптоза сливаются в общий исполнительный
механизм, мы попытались запустить программу клеточного самоубийства, действуя не на
внешние рецепторы, а на внутриклеточные триггеры. Для этого клетки обрабатывали
цитотоксическими лекарствами разных классов, индукторами окислительного клеточного
стресса (перекисью
водорода или витамином К
3
), рентгеновским и ультрафиолетовым
излучением. Во всех случаях доля клеток с признаками индуцированного апоптоза в
популяции клона А4 оказывалась в 2–10 раз ниже, чем у клеток
Jurkat
.
Из наших результатов следует, что стимулы самой различной природы, активирующие
программу клеточной
гибели опухолевых клеток
Jurkat
, практически не вызывают
апоптоз клеток клона А4. Означает ли этот факт, что клетки А4 нельзя убить? Разумеется,
нет. Клетки А4 можно умертвить, но такой дозой лекарства, которая несовместима с
жизнью пациента.
На родительскую линию
Jurkat
цитостатики действуют в
концентрациях на один-два порядка ниже. Другими словами, не способные к апоптозу
клетки А4 проявляют фенотип множественной лекарственной устойчивости.
Достарыңызбен бөлісу: