65
ставлены следующие задачи:
– выявить возбудитель инфекционной
патологии;
– определить их чувствительность к ан-
тибиотикам
in vitro
.
Материалы и методы.
Практический и
производственный опыт производился на базе
центра аквакультуры и НИИ биотехнологии и
природопользования
Западно-Казахстанского
аграрно-технического университета имени
Жангир хана.
Материалом исследований послужили
смывы из области поражения больных
инфекционной патологией сибирских осетров
(Acipenser baerii).
Исследованию по оценке антибиотико-
чувствительности подлежат чистые культуры
микроорганизмов после первичного посева
образца клинического материала, в
послед-
нем случае параллельно необходимо провес-
ти идентификацию культуры [6].
Бактериологические исследования про-
изведены по общепринятым методам. Исход-
ный материал высевалась на среду МПА для
последующего выделения чистой культуры
возбудителя. Посевы культивируют в термо-
стате в течение 24 часов при температуре
37
о
С.
Изучение
морфологических, и тинкто-
риальных признаков микроба проводилось
путем микроскопии фиксированных и окра-
шенных по Граму препаратов, а также живых
неокрашенных микроорганизмов в раздавлен-
ной капле [4]. Далее проведен посев на МПБ,
чтобы приготовить бактериальную суспензию
для инокуляции. Продолжительность инкуба-
ции 18 часов при 37
о
С.
Чувствительность бактерий к антибио-
тикам
in
vitro
определяли
диско-
диффузионным методом, при котором в каче-
стве носителя АМП используют бумажный
диск. Стандартный
инокулюм наносят пи-
петкой на поверхность чашки Петри со сре-
дой АГВ в объеме 1 мл, равномерно распре-
деляют по поверхности покачиванием, после
чего удалили избыток инокулюма пипеткой.
Непосредственно после аппликации
дисков чашки Петри помещают в термостат
кверху дном и инкубируют при температуре
37°С в течение 24 ч. Увеличение интервала
времени между нанесением дисков на по-
верхность среды и
началом инкубации при-
водит к «преддиффузии» АМП в агар и к
увеличению диаметра зоны подавления рос-
та, что приведет к искаженному результату.
Результат учитывают путем измерения
диаметра зоны вокруг диска в миллиметрах.
Чашку Петри помещают кверху дном на тем-
ную матовую поверхность, так чтобы свет
падал на нее под углом 45° (учет в
отражен-
ном свете). Диаметр зон задержки роста из-
меряют с точностью до 1 мм.
Интерпретация результатов исследова-
ний. Наличие зон диаметром до 10 мм или
полное отсутствие зон задержки роста микро-
бов вокруг диска указывают на то, что испы-
туемая культура устойчива к данной концен-
трации антибиотика.
Наличие зон диаметром от 10 до 14 мм
свидетельствует о малой чувствительности
культуры к данной
концентрации антибиоти-
ка.
Диаметр зоны от 15 до 25 мм – испы-
туемая культура чувствительна к данной кон-
центрации антибиотика.
Если диаметр зоны подавления роста от
25 мм и более, то бактерий высокочувстви-
тельны к действию антибиотиков.
Достарыңызбен бөлісу: