Қазақстан республикасы ауыл



Pdf көрінісі
бет133/164
Дата04.11.2023
өлшемі5,46 Mb.
#189541
1   ...   129   130   131   132   133   134   135   136   ...   164
Байланысты:
СЧ 2023 том 1 часть 2

Список литературы
1 Andrew C. V., Partition of Heat-Labile-Enterotoxin Genes between Human and Animal 
Esherichia coli Isolates[Техт]/ C.V. Andrew, W. Dallas // Infect. Immun., 1987. – Vol. 55, № 5, 
P. 1329–1331.
2 Smith H.W., Halls S. Studies on Escherichia coli enterotoxin[Техт]/ Smith H.W., Halls 
S. //- J. Pathology. Bacteriology.-1967.-V. 93.-P.531-543.
3 Nataro J.P. Diarreagenic Escherichia coli[Техт]/ Nataro J.P., Kaper J.B. //Clin. 
Microbial.Rev. 1998.-V.11.-P.142-201.
4 Hyesuk S., Weiping Z., Development of effective vaccines for enterotoxigenic 
Escherichia coli [Техт]/ Hyesuk S., Weiping Z., // The Lancet infectious disease.-2020.-V.20.-
Is.- 2.-P.150-152.
5 Kaushik H. Immunization with recombinant fusion of LTB and linear epitope (40–62) 
of epsilon toxin elicits protective immune response against the epsilon toxin of Clostridium 
perfringens type D [Техт]/ Kaushik, H., Deshmukh, S.K., Solanki, A.K. et al. //AMB Expr. - 
2019.-V,9. -Р,-105. (https://doi.org/10.1186/s13568-019-0824-3).
УДК 636:612.084 
ИСПОЛЬЗОВАНИЕ РИБОФЛАВИНА В ПЕРИОД ИНКУБАЦИИ
 ЯИЦ ПЕРЕПЕЛОВ
Понтанькова Е.П., младший научный сотрудник
Колокольникова Т.Н., ведущий научный сотрудник, к.с-х.н.
Сибирский научно-исследовательский институт птицеводства — филиал 
Федерального государственного бюджетного научного учреждения 
«Омский аграрный научный центр» 
с. Морозовка, Омская область, Россия
Пренатальный период в развитии птицы - чрезвычайно важный и критический пери-
од. Технология кормления в яйце может помочь эмбриону успешно преодолеть этот этап 
и наиболее полно реализовать свой генетический потенциал роста [1].
В отличие от жирорастворимых витаминов, витамины группы В не накапливаются в 
организме птиц, поэтому недостаток их в рационе несушки быстро приводит к гипови-
таминозам и как следствие снижению инкубационных качеств яиц, ранней смертности 
эмбрионов, снижению качества суточного молодняка.
Рибофлавин для эмбриогенеза птиц имеет наибольшее значение. Его недостаток при-
водит к нарушениям передачи информации между клетками, синтеза гормонов и фор-
мирования структуры белка. Он также является коферментом многих жизненно важных 
окислительно-восстановительных ферментов и участвует в метаболизме белков, жиров, 
и углеводов, активации других витаминов, ксенобиотиков [2].


283
Наибольшее поглощение куриным эмбрионом рибофлавина из яйца происходит на 
14-15 сутки инкубации (12-14 сутки инкубации перепелиных эмбрионов). При недостат-
ке этого витамина в этот же период увеличивается эмбриональная смертность [3].
Одна из причин снижения витаминов в инкубационном яйце – его длительное хра-
нение. К примеру, через 3 недели с момента сбора содержание рибофлавина в желтке 
снижается на – 1,76 мкг/г; в белке – на 0,48 мкг/г [4].
Аллантоис на 13 сутки инкубации покрывает всю внутреннюю поверхность скорлу-
пы, за исключением воздушной камеры. Через поры скорлупы по кровеносным сосудам 
эмбрион получает кислород и минеральные вещества. При обработке яйца в этот период 
биологически активными растворами, в том числе рибофлавина, можно стимулировать 
эмбриогенез сельскохозяйственной птицы.
Цель работы – определить оптимальную концентрацию раствора рибофлавина для 
аэрозольной обработки перепелиных яиц на 13,5 сутки инкубации.
В СибНИИП-филиал ФГБНУ «Омский АНЦ» изучено влияние обработки перепели-
ных яиц (порода омская) водным раствором рибофлавина на результаты их инкубации. 
Группы формировали от одновозрастных перепелок методом аналогов - по массе яиц и 
сроку сбора. Яйца инкубировали в инкубаторе «Стимул-4000». Аэрозольную обработку 
яиц проводили на 13,5 сутки сразу после выемки из инкубатора в контрольной группе - 
водой, в опытных группах 1 и 2 – 0,01 и 0,03% растворами рибофлавина. Температура 
воды и раствора до начала обработки – +10℃. Яйца обрабатывали до полного смачива-
ния, затем обсушивали в течение 5 минут, далее устанавливали в инкубатор для продол-
жения инкубации. Время от выемки из инкубатора до возвращения яиц в инкубатор - 10 
минут. 
Для изучения влияния рибофлавина на эмбриональное развитие провели анатомиче-
скую разделку суточных перепелят. 
Использование рибофлавина для аэрозольной обработки яиц на 13,5 сутки инкубации 
в группах 1 и 2 способствовало повышению жизнеспосоности эмбрионов. В результате 
выше выводимость яиц на 5,29 и 7,96%, вывод молодняка 4, 91 и 7,24% (табл. 1). 
Лучший результат в группах 1 и 2 достигнут за счет уменьшения количества отходов 
инкубации категории «слабые и калеки» - на 5,12 и 5,91% по сравнению с контрольной 
группой. В группе 2 меньше отходов категории «эмбрионы, замершие 4-15,5 сутки» - на 
0,96-0,99%; «задохлики» - на 0,86-0,91% в сравнении с контролем и группой 1. 
Таблица 1 - Результаты инкубации
Показатель
Группа
К
1
2
Выводимость яиц, %
71,11
76,40
79,07
Вывод молодняка, %
66,67
71,58
73,91
Отходы инкубации, %:
неоплодотворенные яйца
6,25
6,32
6,52
эмбрионы, замершие до 48 часов инкубации
2,08
2,11
2,17
кровяное кольцо яйца
3,13
3,16
3,26
эмбрионы, замершие 4-15,5 сутки
3,13
3,16
2,17
задохлики 
5,21
5,26
4,35
слабые и калеки
13,53
8,41
7,62
Абсолютная живая масса суточных перепелят всех групп была одинаковой и соста-
вила 9,1г. Однако перепелята 1-й и 2-й групп превосходили контрольных по развитию 
внутренних органов и мышц (табл. 2). 


284
Так, при обработке яиц растворами рибофлавина 0,01 и 0,03% концентрации в срав-
нении с обработкой водой у перепелят больше масса: почек – на 0,092 и 0,208%; желе-
зистого желудка – на 0,022 и 0,156%; мышечного желудка – на 0,139 и 0,210%; кутикулы 
мышечного желудка – на 0,136 и 0,345%; мышц груди – на 0,104 и 0,127%; бедра – на 
0,376 и 0,641%; голени – на 0,288 и 0,311% при снижении массы желточного мешка на 
0,037 и 0,332%.
Перепелята 2-й группы превосходили перепелят 1-й группы по массе почек – на 
0,116%; железистого желудка – на 0,133%; мышечного желудка и его кутикулы – на 0,071 
и 0,209%; мышц груди, бедра и голени на 0,023; 0,009 и 0,023%, чему способствовала 
лучшая усвояемость питательных веществ желтка эмбрионом во время инкубации. В ре-
зультате желточный мешок у перепелят 2-й группы был меньше на 0,295%. 
Таблица 2 - Результаты анатомической разделки суточных перепелят (относительная 
живая масса от предубойной), %
Показатель
К
1
2
Масса:
сердца
0,8104±0,02543
0,8220±0,04524
0,8281±0,07620
печени (с желчным пузырем) 2,7289±0,07071
2,7288±0,08930
2,7224±0,04825
почек
0,6449±0,05567
0,7364±0,07558
0,8529±0,05131
железистого желудка
0,9536±0,06062
0,9758±0,07358а
1,1091±0,05032
мышечного желудка
4,2093±0,15816
4,3479±0,18958
4,4193±0,09319
кутикулы мышечного 
желудка
0,4894±0,03962
0,6250±0,05512
0,8340±0,11617
желточного мешка 
(с содерж.)
5,1883±0,59118
5,1516±0,62383
4,8566±0,47784
мышц:
грудных
1,5334±0,03773
1,6378±0,04983
1,6607±0,04122
бедренных 
4,0822±0,20421
4,4578±0,34716
4,7231±0,23967
голени
2,9477±0,12582
3,2359±0,14215
3,2586±0,12053
Установлено, что оптимальной концентрацией раствора рибофлавина для аэрозоль-
ной обработки яиц на 13,5 сутки инкубации является 0,03%. Обработка способствует 
повышению жизнеспособности эмбрионов, в результате увеличивается выводимость яиц 
на 7,96%; лучше развивается выделительная и пищеварительная системы и мышцы эм-
брионов при лучшем использовании питательных веществ желточного мешка.


Достарыңызбен бөлісу:
1   ...   129   130   131   132   133   134   135   136   ...   164




©engime.org 2024
әкімшілігінің қараңыз

    Басты бет